1차시
01-01. 형질전환부터 단백질 추출까지의 실험 과정 (학습목표)
2차시
01-02. 형질전환부터 단백질 추출까지의 실험 과정
3차시
02-01. 유전자 발현 원리와 재조합 DNA 기술 (학습목표)
4차시
02-02. 유전자 발현 원리와 재조합 DNA 기술
5차시
03-01. 형질전환과 선택 배지의 콜로니 확인 (학습목표)
6차시
03-02. 형질전환과 선택 배지의 콜로니 확인
7차시
04-01. 제한효소 DNA 절단과 아가로스 겔 전기영동 (학습목표)
8차시
04-02. 제한효소 DNA 절단과 아가로스 겔 전기영동
9차시
05-01. PCR 유전자 증폭과 프라이머 설계·조건 최적화 (학습목표)
10차시
05-02. PCR 유전자 증폭과 프라이머 설계·조건 최적화
11차시
06-01. 라이게이션을 통한 재조합 플라스미드 제작 (학습목표)
12차시
06-02. 라이게이션을 통한 재조합 플라스미드 제작
13차시
07-01. 열충격법을 이용한 대장균 형질전환과 항생제 선별 (학습목표)
14차시
07-02. 열충격법을 이용한 대장균 형질전환과 항생제 선별
15차시
08-01. 콜로니 선별·배양과 콜로니 PCR 검증 (학습목표)
16차시
08-02. 콜로니 선별·배양과 콜로니 PCR 검증
17차시
09-01. 알칼리 용해법을 이용한 플라스미드 미니프렙 (학습목표)
18차시
09-02. 알칼리 용해법을 이용한 플라스미드 미니프렙
19차시
10-01. 분광광도계를 이용한 DNA 정량과 순도 평가 (학습목표)
20차시
10-02. 분광광도계를 이용한 DNA 정량과 순도 평가
21차시
11-01. IPTG 발현 유도와 SDS-PAGE 단백질 확인 (학습목표)
22차시
11-02. IPTG 발현 유도와 SDS-PAGE 단백질 확인
23차시
12-01. His-tag 친화성 크로마토그래피 단백질 정제 (학습목표)
24차시
12-02. His-tag 친화성 크로마토그래피 단백질 정제
25차시
13-01. 웨스턴 블롯을 이용한 재조합 단백질 검출 (학습목표)
26차시
13-02. 웨스턴 블롯을 이용한 재조합 단백질 검출
27차시
14-01. 비색 분석을 통한 효소 활성과 단백질 기능 분석 (학습목표)
28차시
14-02. 비색 분석을 통한 효소 활성과 단백질 기능 분석
29차시
15-01. 분자생물학 실험 과정의 통합 이해와 성과 점검 (학습목표)
30차시
15-02. 분자생물학 실험 과정의 통합 이해와 성과 점검
31차시
[숏츠] 01. 플라스미드 DNA를 이용한 단백질 발현 원리
32차시
[숏츠] 02. 형질전환과 형질전환체 선별
33차시
[숏츠] 03. 제한효소를 이용한 DNA 절단 원리
34차시
[숏츠] 04. 프라이머와 PCR의 DNA 증폭 원리
35차시
[숏츠] 05. 라이게이션을 통한 재조합 플라스미드 제작
36차시
[숏츠] 06. 열충격법을 이용한 대장균 형질전환과 항생제 선별
37차시
[숏츠] 07. 콜로니 PCR을 이용한 형질전환체 검증
38차시
[숏츠] 08. 알칼리 용해법을 이용한 플라스미드 미니프렙
39차시
[숏츠] 09. IPTG를 이용한 단백질 발현 유도 원리
40차시
[숏츠] 10. 웨스턴 블롯을 이용한 단백질 검출
41차시
[숏츠] 11. His-tag 친화성 크로마토그래피 단백질 정제
42차시
[숏츠] 12. 효소 활성 측정을 통한 단백질 기능 확인
43차시
[숏츠] 13. 분광광도계를 이용한 DNA 정량
44차시
[숏츠] 14. SDS-PAGE를 이용한 단백질 분리와 확인
45차시
[숏츠] 15. 플라스미드 실험의 전체 흐름
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![[실험실 프로젝트] 플라스미드 DNA, 세포 속에 단백질을 만들다 과정 이미지](/data/file/bec3b222b7d81f1c0e6d58026d949ce1.png)